Как приготовить бромистый этидий

Электрофорез в агарозном геле

1. 10 х буфер трис-борат-ЭДТА (ТБЭ):

0,9 М основный трис,

0,9 М борная кислота,

рН доводят до 8,1—8,2 сухой борной кислотой

2. Агароза (для электрофореза)

3. Бромистый этидий EtBr: 10 мг/мл в стерильной дистиллированной воде

4. 6х буфер для нанесения: 0,25% бромфеноловый синий, 40% (в/о) сахароза в 1х ТБЭ

8.3;(храниться при NT в чистой посуде)

10x сток вполне устойчиво хранится при NT, если его профильтровать через 0.4µm фильтр.

Для PAAG используется как 1х, для агарозных — как 0.5х. Для агарозных гелей имеет смысл применять при работе с маленькими (< 200bp) фрагментами. Считается, что клонирование из ТВЕ гелей сложнее, чем из ТАЕ.

Трис-ацетатный буфер, 1x pH = 7.6:

хранить основной сток при 4oC, рабочее количество (

p(50x)=1.0878 удобно вначале растворить Tris и EDTA и лишь затем добавлять кислоту, следя за pH.

1. Готовят 1 х ТБЭ в объеме, достаточном для заполнения камеры для электрофореза и приготовления геля.

2.Добавляют к 1 х ТБЭ агарозу в количестве, необходимом для получения 0,35—0,45% (в/о) раствора, и нагревают в микроволновой печи до полного расплавления агарозы.

3. Охлаждают смесь до +/- 50 °С.

За время охлаждения агарозы, заклеивают края УФ — проницаемой кюветы для геля автоклавированной липкой лентой.

4.Добавляют к раствору агарозы бромистый этидий до конечной концентрации 0,5 мкг/мл и осторожно перемешивают, избегая появления в геле пузырьков воздуха.

5. Теплую агарозу выливают в кювету для геля и равномерно распределяют ее по кювете. Вертикально вставляют гребенку так, чтобы ее зубцы не доставали до дна примерно 1,5 мм.

6. Оставляют кювету с агарозным гелем на 30 мин, затем осторожно удаляют гребенку и липкую ленту. Кювету с гелем помещают в электрофорезную камеру, содержащую необходимое количество 1 х ТБЭ с бромистым этидием в конечной концентрации 0,5 мкг/мл.

7. Подготавливают к электрофорезу образцы исследуемой и маркерной ДНК, для чего смешивают их с буфером для нанесения (5:1, о/о). Чтобы получить четкий сигнал при окрашивании бромистым этидием-EtBr, в лунку шириной 5 мм достаточно внести 200 нг маркерной ДНК. Для построения стандартной кривой необходимо использовать маркерные фрагменты, длина которых примерно равна длине исследуемой ДНК.

(EtBr при форезе движется от (+) к (-). Если хочется, чтобы он не уходил из геля, лучше ввести его и в форезный буфер.)

8. Осторожно вносят в лунки исследуемую и маркерную ДНК. для повышения точности определения размера маркерную ДНК наносят по обе стороны от исследуемой.

9. Проводят электрофорез при градиенте напряженности 1—3 В на 1 см геля в течение 1—3 ч.

10. Просматривают гель в УФ-свете на транс иллюминаторе и фотографируют .

Источник

Практикум по биохимии. Часть I. Физико-химические методы: Учебное пособие , страница 28

Бромистый этидий – флуоресцирующий краситель, интеркалирующий между соседними основаниями ДНК. УФ-излучение, поглощаемое ДНК в области 260 нм, передается на краситель и испускается затем в краснооранжевой области видимого спектра (590 нм). В связи с этим краситель используется для визуализации полос ДНК при электрофорезе.

1. Прибор для электрофореза.

2. Автоматические пипетки.

3. Ультрахемископ для обнаружения окрашенных полос ДНК.

4. агароза фирмы Кох-Лайт (Англия).

5. ДНК фага лямбда (концентрация, примерно, 500 мкг/мл).

6. Маркер лямбда ДНК\HindIII (концентрация, примерно, 500 мкг/мл).

7. Раствор этидий бромида 5 мкг/мл.

8. 0,02% раствор бромфенолого синего и 50 мМ ЭДТА в 50 %
глицерине.

9. Буфер для электрофореза (40 мМ трис-ацетат, 2 мМ ЭДТА, рН 8,0).

Приготовление 1 % агарозы. 0,5 г агарозы поместить в коническую колбу, добавить 50 мл буферного раствора и поставить в кипящую водяную баню на 20-30 минут до полного расплавления агарозы, периодически перемешивая. Затем охладить до 65 °С и залить в кювету для электрофореза. (Расстояние между пластинами 7 см).

Для этого сначала с помощью пипетки в I мл залить щели в кювете небольшим количеством расплавленной агарозы. Затем, когда этот расплав затвердеет, вылить в форму остальной горячий (65 °С) раствор агарозы и немедленно вставить на расстоянии примерно 2 см от поперечной пластины гребенку, от зубцов которой в геле останутся «карманы» для проб. Необходимо, чтобы между дном «кармана» и основанием геля оставался слой агарозы толщиной 0,5-1 мм.

После того как гель полностью затвердеет (через 30-45 минут после заливки), осторожно удалить гребенку и поперечные пластины, образующие кювету.

Далее залить в кювету буферный раствор таким образом, чтобы гель сверху был покрыт слоем раствора толщиной 1–5 мм.

Проведение электрофореза (на двоих студентов). Внести в две пластиковые пробирки автоматической микропипеткой по 30 мкл буферного раствора и по 10 мкл раствора бромфенолового синего, содержащего ЭДТА. Добавить в первую пробирку 3 мкл ДНК, во вторую – 4 мкл маркера HindIII, перемешать.

Каждому студенту внести микропипеткой по 10 мкл ДНК в два «кармана» геля и в следующие два “кармана” – по 10 мкл маркера.

Подключить электроды к источнику постоянного тока.

ВНИМАНИЕ! Отрицательно заряженные молекулы ДНК и ее фрагменты движутся к аноду. Включить напряжение.

За протеканием электрофореза следят по движению красителя (бромфенолового синего). Когда краситель пройдет 2/3 длины геля, можно отключить напряжение.

Осторожно вынуть гель вместе со стеклом, перенести в пустую кювету для проявления, осторожно сдвинув его шпателем со стекла (не повредите гель!). Залить раствор бромистого этидия.

ВНИМАНИЕ! Бромистый этидий — сильный мутаген. Работу с ним необходимо проводить в перчатках.

Через 40 минут вынуть гель из раствора бромистого этидия, осторожно подведя под него стекло. Отмыть дистиллированной водой находящийся на стекле гель. Сняв со стекла, поместить его под ультрахемископ для обнаружения полос ДНК и ее фрагментов.

Показать преподавателю картину флюоресценции в геле и зарисовать ее на бумаге. На основании данных о длине ДНК и сайтах рестрикции рассчитать длину фрагментов ДНК для маркера и нарисовать предполагаемую электрофореграмму. Сравнить ее с полученным результатом.

1. Д. Г. Кнорре, Л. Ф. Крылова, В. С. Музыкантов. Физическая химия. М.: Высш. шк., 1990.

2. Д. Г. Кнорре, С. Д. Мызина. Биологическая химия. М.:Высш. шк., 1998.

3. Б. В. Айвазов. Введение в хроматографию. М.: Высш. шк., 1983.

4. Методы исследования нуклеиновых кислот. М.: Мир, 1970

5. Т.Маниатис и др. Молекулярное клонирование. М., «Мир», 1984.

6. Л.А.Остерман. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот. Электрофорез и ультрацентрифугирование. М., «Наука», 1981.

• АлтГТУ 419
• АлтГУ 113
• АмПГУ 296
• АГТУ 267
• БИТТУ 794
• БГТУ «Военмех» 1191
• БГМУ 172
• БГТУ 603
• БГУ 155
• БГУИР 391
• БелГУТ 4908
• БГЭУ 963
• БНТУ 1070
• БТЭУ ПК 689
• БрГУ 179
• ВНТУ 120
• ВГУЭС 426
• ВлГУ 645
• ВМедА 611
• ВолгГТУ 235
• ВНУ им. Даля 166
• ВЗФЭИ 245
• ВятГСХА 101
• ВятГГУ 139
• ВятГУ 559
• ГГДСК 171
• ГомГМК 501
• ГГМУ 1966
• ГГТУ им. Сухого 4467
• ГГУ им. Скорины 1590
• ГМА им. Макарова 299
• ДГПУ 159
• ДальГАУ 279
• ДВГГУ 134
• ДВГМУ 408
• ДВГТУ 936
• ДВГУПС 305
• ДВФУ 949
• ДонГТУ 498
• ДИТМ МНТУ 109
• ИвГМА 488
• ИГХТУ 131
• ИжГТУ 145
• КемГППК 171
• КемГУ 508
• КГМТУ 270
• КировАТ 147
• КГКСЭП 407
• КГТА им. Дегтярева 174
• КнАГТУ 2910
• КрасГАУ 345
• КрасГМУ 629
• КГПУ им. Астафьева 133
• КГТУ (СФУ) 567
• КГТЭИ (СФУ) 112
• КПК №2 177
• КубГТУ 138
• КубГУ 109
• КузГПА 182
• КузГТУ 789
• МГТУ им. Носова 369
• МГЭУ им. Сахарова 232
• МГЭК 249
• МГПУ 165
• МАИ 144
• МАДИ 151
• МГИУ 1179
• МГОУ 121
• МГСУ 331
• МГУ 273
• МГУКИ 101
• МГУПИ 225
• МГУПС (МИИТ) 637
• МГУТУ 122
• МТУСИ 179
• ХАИ 656
• ТПУ 455
• НИУ МЭИ 640
• НМСУ «Горный» 1701
• ХПИ 1534
• НТУУ «КПИ» 213
• НУК им. Макарова 543
• НВ 1001
• НГАВТ 362
• НГАУ 411
• НГАСУ 817
• НГМУ 665
• НГПУ 214
• НГТУ 4610
• НГУ 1993
• НГУЭУ 499
• НИИ 201
• ОмГТУ 302
• ОмГУПС 230
• СПбПК №4 115
• ПГУПС 2489
• ПГПУ им. Короленко 296
• ПНТУ им. Кондратюка 120
• РАНХиГС 190
• РОАТ МИИТ 608
• РТА 245
• РГГМУ 117
• РГПУ им. Герцена 123
• РГППУ 142
• РГСУ 162
• «МАТИ» — РГТУ 121
• РГУНиГ 260
• РЭУ им. Плеханова 123
• РГАТУ им. Соловьёва 219
• РязГМУ 125
• РГРТУ 666
• СамГТУ 131
• СПбГАСУ 315
• ИНЖЭКОН 328
• СПбГИПСР 136
• СПбГЛТУ им. Кирова 227
• СПбГМТУ 143
• СПбГПМУ 146
• СПбГПУ 1599
• СПбГТИ (ТУ) 293
• СПбГТУРП 236
• СПбГУ 578
• ГУАП 524
• СПбГУНиПТ 291
• СПбГУПТД 438
• СПбГУСЭ 226
• СПбГУТ 194
• СПГУТД 151
• СПбГУЭФ 145
• СПбГЭТУ «ЛЭТИ» 379
• ПИМаш 247
• НИУ ИТМО 531
• СГТУ им. Гагарина 114
• СахГУ 278
• СЗТУ 484
• СибАГС 249
• СибГАУ 462
• СибГИУ 1654
• СибГТУ 946
• СГУПС 1473
• СибГУТИ 2083
• СибУПК 377
• СФУ 2424
• СНАУ 567
• СумГУ 768
• ТРТУ 149
• ТОГУ 551
• ТГЭУ 325
• ТГУ (Томск) 276
• ТГПУ 181
• ТулГУ 553
• УкрГАЖТ 234
• УлГТУ 536
• УИПКПРО 123
• УрГПУ 195
• УГТУ-УПИ 758
• УГНТУ 570
• УГТУ 134
• ХГАЭП 138
• ХГАФК 110
• ХНАГХ 407
• ХНУВД 512
• ХНУ им. Каразина 305
• ХНУРЭ 325
• ХНЭУ 495
• ЦПУ 157
• ЧитГУ 220
• ЮУрГУ 309

Полный список ВУЗов

Чтобы распечатать файл, скачайте его (в формате Word).

Источник

Способ получения этидия бромистого

Владельцы патента RU 2396260:

Изобретение относится к способу получения этидия бромистого (3,8-диамино-5-этил-6-фенилфенантридиния бромистого) путем кватернизации 3,8-динитро-6-фенилфенантридина избытком диэтилсульфата с последующим восстановлением полученного 3,8-динитро-5-этил-6-фенилфенантридиния этилсульфата железом при нагревании в смеси 1 н. серной кислоты и 95%-ного этанола, обработкой раствором гидроксида натрия, экстракцией н-бутанолом и обработкой бромистоводородной кислотой. Технический результат — упрощение способа и повышение выхода продукта, который применяется в качестве флуоресцентного красителя, широко используемого в молекулярной биологии, генной инженерии и диагностической медицине.

Изобретение относится к органической химии, конкретно к способам получения этидия бромистого (3,8-диамино-5-этил-6-фенилфенантридиния бромистого) -флуоресцентного красителя, широко используемого в молекулярной биологии, генной инженерии и диагностической медицине [1) Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Пер. с англ. М.: Мир, 1984. 480 с.; 2) Pat. 4683202 US, Int. C1. C12Q 1/68, C12N 15/10, B01L 7/00, C07K 14/795, C07K 14/805. US C1. 435/91.2, 435/317.1, 435/320.1, 536/23.1, 536/24.33. Process for amplifying nucleic acid sequences; 3) Using molecular marker technology in studies on plant genetic diversity, DNA-based technologies. PCR-based technologies Sequence-tagged sites (Microsatellites, SCARs, CAPS, ISSRs), IPGRI and Cornell University, 2003, 38 pp.]. При экспозиции в УФ свете он флуоресцирует оранжевым цветом (590 нм), интенсивность которого многократно усиливается (в 20-25 раз) при его связывании с ДНК и РНК [Karsten U., Wollenberger А. // Anal. Biochem. 1977. V.77. P.464-470], что позволяет обнаруживать нуклеиновые кислоты в клетках и тканях. Современными методами флуоресцентной микроскопии с помощью этидия бромистого можно обнаружить количества ДНК до 2 нанограммов в пробе [Giache V., Pirami L., Becciolini А. // J. Biolumin. Chemilumin. 1994. V.9. N 3. P.329-332].

Известен способ синтеза этидия бромистого, первая стадия которого — кватернизация 3,8-динитро-6-фенилфенантридина (I) (2,7-динитро-9-фенилфенантридин по устаревшей номенклатуре) с диэтилсульфатом [Pat. 735438 Brit., CI. 2(3), С2А (3:6:13), С2 В27, C2R (18:19). Improvements in or relating to phenanthridinium salts.] (прототип). Ha этой стадии в качестве растворителя применяли нитробензол, который удаляли далее гидродистилляцией. Для синтезированного с выходом 24% кристаллического продукта кватернизации, названного 2,7-динитро-9-фенил-10-этил-фенантридиний этосульфатом [3,8-динитро-5-этил-6-фенилфенантридиний этилсульфат (II)], в патенте не приведено данных элементного анализа и каких-либо характеристик. На второй стадии синтеза полученный кристаллический продукт кватернизации растворяли в кипящей воде и проводили его восстановление железом при кипячении. Далее осаждали избытком аммиака гидроксид железа (+2), нагревали смесь для коагуляции этого гидроксида и удаляли избыток железа и гидроксид фильтрованием. Затем к реакционной смеси добавляли концентрированный раствор гидроксида натрия. Экстрагировали смесь н-бутанолом, экстракт промывали водой и обрабатывали раствором аммоний бромида. После гидродистилляции бутанола и обработки остатка смесью метанол-вода (1:1, по объему), получали с выходом 84% продукт, названный гемигидратом 2,7-диамино-9-фенил-10-этилфенантридиний бромида [3,8-диамино-5-этил-6-фенил-фенантридиний бромид (III)]. Для этого продукта также не приведено данных элементного состава и каких-либо характеристик. Таким образом, выход этидия бромистого, согласно данным патента, составил 20% в расчете на 3,8-динитро-6-фенилфенантридин (I). Путь синтеза этидия бромистого способом-прототипом приведен на схеме 1.

Недостатком способа-прототипа синтеза этидия бромистого является применение нитробензола в качестве растворителя на первой стадии кватернизации. Применение нитробензола и необходимость его удаления для выделения 3,8-динитро-5-этил-6-фенилфенантридиний этилсульфата (II) — полупродукта для последующей стадии получения этидия бромистого — удорожает процесс и увеличивает время синтеза.

Следующим недостатком способа-прототипа является применение воды для растворения этилсульфата (II) при восстановлении его железом. Гидролиз этилсульфата (II) с образованием трудно растворимых побочных продуктов в этих условиях приводит к снижению выхода и чистоты целевого этидия бромистого на последующих стадиях обработки.

Еще одним недостатком способа-прототипа является применение бромистого аммония на заключительной стадии синтеза, требующее удаления его избытка на стадии выделения целевого продукта.

Задачей изобретения является создание простого, дешевого способа получения этидия бромистого (3,8-диамино-5-этил-6-фенилфенантридиния бромистого), позволяющего получать целевой продукт с высоким выходом.

Задача решается способом, в котором этидий бромистый получают кватернизацией 3,8-динитро-6-фенилфенантридина избытком диэтилсульфата, выступающим в качестве реагента и растворителя, последующим восстановлением полученного 3,8-динитро-5-этил-6-фенилфенантридиний этилсульфата (II) железом при нагревании в смеси 1 н. серной кислоты и 95%-ного этанола, обработкой раствором гидроксида натрия, экстракцией н-бутанолом и обработкой экстракта бромистоводородной кислотой. Выход этидия бромистого составляет 42% [в расчете на 3,8-динитро-6-фенилфенантридин (I)].

Путь синтеза этидия бромистого, представляемый настоящим изобретением, приведен на схеме 2.

Диэтилсульфат выступает в качестве реагента и растворителя на стадии кватернизации, после выделения продукта избыток диэтилсульфата регенерируется вакуумной перегонкой.

Использование смеси 1 н. серной кислоты и 95%-ного этанола на стадии восстановления этилсульфата (II) железным порошком позволяет исключить образование трудно растворимых продуктов его гидролиза.

Использование на заключительной стадии синтеза бромистоводородной кислоты позволяет исключить применение бромистого аммония, требующего удаления его избытка при выделении целевого продукта.

Таким образом, предлагаемый способ более прост и дешев по сравнению с прототипом и позволяет увеличить выход этидия бромистого до 42% [в расчете на 3,8-динитро-6-фенилфенантридин (I)] (в прототипе выход составляет 20%).

Данное изобретение иллюстрируется примерами.

Пример 1. 3,8-Динитро-5-этил-6-фенилфенантридиний этилсульфат (II).

Смесь 121 г (0.351 моля) 3,8-динитро-6-фенилфенантридина (I) и 221 мл (260 г, 1.69 моля) диэтилсульфата нагрели при перемешивании до температуры 165°С и выдержали при 165±2°С в течение 1.5 ч. Наблюдали образование темноокрашенного раствора и выделение газа (этилена). Смесь оставили на 16 ч при 20°С, затем при перемешивании добавили 150 мл абсолютного эфира. Декантировали эфирный слой с образовавшегося вязкого тестообразного продукта, продукт обработали 2×75 мл эфира. К оставшемуся в колбе тестообразному продукту добавили 330 мл 95%-ного этанола и смесь тщательно растерли. Образовавшийся мелкокристаллический продукт отфильтровали, промыли на фильтре 100 мл 95%-ного этанола. Не высушивая, продукт загрузили в бумажный патрон аппарата Сокслета и экстрагировали 4×250 мл 95%-ного этанола кипячением каждый раз по 8 ч. Из объединенных спиртовых экстрактов, оставляемых при 0÷+5°С на 16 ч, отфильтровали игольчатые кристаллы. Их высушили при 120-130°С до постоянного веса. Получили 130 г (74%) этилсульфата (II) в виде мутных выветрившихся игл с т.пл. 203-205°С (с разл., запаянный капилляр), содержание основного вещества по данным ВЭЖХ составляет 98%.

Найдено, %: С 55.49, 55.23; Н 4.18,3.99; N 8.38, 8.27; S 6.75,6.50. C₂₃H₂₁N₃O₈S. Вычислено, %: С 55.30; Н 4.25; N 8.41; S 6.42.

Спектр ЯМР 1 Н (5%-ный раствор в ацетоне-D₆, δ /м.д., J/Гц): 0.93 и 1.76 (оба т, по 3 Н, J=7, группы СН₃ фрагментов С₂Н₅О и C₂H₅N соответственно); 3.55 и 5.27 (оба к, по 2 Н, J — 7, группы СН₂ вышеупомянутых фрагментов соответственно); 7.8-8.0 м (3 Н) и 8.1-8.2 м (2 Н) (С₆Н₅); 8.43 д (1 Н, J=2,5, Н-7 или Н-4); 8.68 д. д (1 Н, J=9 и J=2, Н-2 или Н-9); 8.86 д. д (1 Н, J=9 и J=2.5, Н-9 или Н-2); 9.38 и 9.42 (оба д, по 1 Н, J=9, Н-1, Н-10); 9.44 д (1 Н, J=2, Н-4 или Н-7).

ИК спектр, KBr: 580, 720, 750, 780, 800, 1020, 1225, 1250, 1350, 1390, 1525, 1550, 1620 см 1 . УФ спектр (EtOH), λ_макс/нм (lg ε): 210 (4.47), 260 (4.20) и 325 (4.22).

Из эфирных и спиртовых декантатов и маточных растворов регенерировали эфир, спирт и 147 г диэтилсульфата с т.кип.95-97°С (0.4 КПа). Из бумажного патрона аппарата Сокслета после высушивания при 120-130°С регенерировали 27 г (22%) исходного 3,8-динитро-6-фенилфенантридина (I). С учетом этого регенерированного исходного соединения выход этилсульфата (II) составил 96%.

Пример 2. 3,8-Диамино-5-этил-6-фенилфенантридиний бромид (этидий бромид) (III). К перемешиваемой смеси 49.0 г (0.0981 моля) этилсульфата (II) в 400 мл 1 н. раствора серной кислоты (содержит 0.2 моля H₂SO₄) прилили 150 мл 95%-ного этанола и затем добавили порциями по 5 г 91.1 г (1.63 грамм-атома) порошка железа. Происходит экзотермическая реакция, окрашивание смеси в темно-красный цвет. После перемешивания в течение 30 мин смесь кипятили 1 ч с обратным холодильником, затем охладили до 25°С и добавили 100 мл 25%-ного аммиака (содержит 1.33 моля NH₃). Образуется объемистый осадок. Довели смесь до кипения для коагуляции осадка гидроокиси железа. Горячую смесь фильтровали, промыли осадок шлама 2×50 мл горячей воды (70-90°С). К охлажденному до 25°С фильтрату, объединенному с промывными водами, добавили по каплям при перемешивании свежеприготовленный охлажденный до 25°С раствор 115 г NaOH в 115 мл воды (содержит 2.875 моля NaOH). Смесь экстрагировали 6×100 мл н. бутанола. Экстракт отфильтровали от следов шлама, к фильтрату добавили при перемешивании 12.5 мл 46.5%-ной бромистоводородной кислоты (содержит 0.105 моля НВ₂) и затем из смеси отогнали н. бутанол и воду при 60-70°С (4 КПа). Остатки н. бутанола удалили, добавляя 3×50 мл воды и снова удаляя отгонкой. Темный смолообразный остаток растворили в 160 мл метанола при кипячении с обратным холодильником, раствор оставили на 16 ч при 0÷±5°С. Осадок отфильтровали и экстрагировали в аппарате Сокслета 2×250 мл метанола (кипячение каждый раз в течение 8 ч). Из объединенных экстрактов, хранимых при 0÷+5°С, отфильтровали темно-красные кристаллы. После высушивания при 105-110°С (0.4 КПа) получили 22.0 г (57%) этидий бромида (III) в виде темно-красного порошка с т.пл. 261-264°С (с разл.), лит.: т.пл. 260-262°С (с разл.) [Алдрич. Каталог-справочник химических реактивов. 2007-2008. Россия. 2864 с], т.пл. 248-249°С (с разл.) [Watkins T.I. // J. Chem. Soc. 1952. P. 3059-3064]. Содержание основного вещества по данным ВЭЖХ составило 97%. Методом ТСХ (пластинки «Kieselgel 60 F₂₅₄» фирмы «Merck», система ацетон-метанол-вода-0.1 н. HCl 3:3.5:2.5:1, по объему) для этидия бромида найдено значение R_f=0.78.

Найдено, %: С 63.51, 63.16; Н 5.07, 5.11; N 10.57, 10.46; Br 19.53, 19.75. C₂₁H₂₀BrN₃.

Вычислено, %: С 63.96; Н 5.12; N 10.66; Br 20.26.

Спектр ЯМР 1 Н (1%-ный раствор в ДМСО-D₆, J /м.д., J/Гц): 1.40 т (3 Н, J=7, СН₃); 4.47 к (2 Н, J=7, СН₂); 5.93 и 6.36 (оба уш. с по 2 Н, 2 группы NH₂); 6.27 д (1 Н, 7=2, Н-7); 7.3-7.4 м (2 Н. Н-2, Н-4); 7.53 д. д (1 Н, J=9 и J=2, Н-9); 7.6-7.8 (м, 5 Н, С₆Н₅); 8.58 и 8.68 (оба д, по 1 Н, J=9, Н-10 и Н-1 соответственно). Отнесения сигналов в спектре ЯМР 1 Н сделаны по аналогии с лит.[Firth W.J., Watkins C.L., Graves D.E., Yielding L. W. // J. Heterocycl. Chem. 1983. V.20. N 3. P.759-765].

ИК спектр, KBr: 845, 1260, 1320, 1410, 1470, 1500, 1630 см -1 соответствует спектрам, приведенным в лит.[Firth W.J., Watkins C.L., Graves D.E, Yielding L.W. // J. Heterocycl. Chem. 1983. V. 20. N 3. P.759-765], [The Sadtler Standard Spectra: Infrared Grating Spectra. Philadelphia. 1966-1989. Spectrum N 22,948].

ЭСП (MeOH), λ_макс/нм (lg ε): 215 (4.62), 295 (4.80) и 528 (3.85) соответствует спектру, приведенному в лит.[The Sadtler Standard Spectra: Ultraviolet Spectra. Philadelphia. 1966-1968. Spectrum N 28,880].

Способ получения этидия бромистого (3,8-диамино-5-этил-6-фенилфенантридиния бромистого) путем кватернизации 3,8-динитро-6-фенилфенантридина диэтилсульфатом в среде растворителя с последующим восстановлением полученного 3,8-динитро-5-этил-6-фенилфенантридиний этилсульфата железом при нагревании, обработкой раствором гидроксида натрия, экстракцией н-бутанолом и обработкой Br-содержащим неорганическим реагентом, отличающийся тем, что в качестве растворителя при кватернизации используют избыток диэтилсульфата, восстановление железом полученного 3,8-динитро-5-этил-6-фенилфенантридиний этилсульфата проводят в смеси 1 н. серной кислоты и 95%-ного этанола, а в качестве Br-содержащего неорганического реагента используют бромистоводородную кислоту.

Источник