Как приготовить жидкость тюрка

Как приготовить жидкость тюрка

нБФЕТЙБМЩ Й ПВПТХДПЧБОЙЕ. лТПЧШ ТБЪОЩИ ЧЙДПЧ ЦЙЧПФОЩИ, НЙЛТПУЛПР, УЮЕФОБС ЛБНЕТБ зПТСЕЧБ, УНЕУЙФЕМШ ЛТПЧЙ ДМС МЕКЛПГЙФПЧ, РПЛТПЧОЩЕ УФЕЛМБ, РТПВЙТЛЙ, НЙЛТПРЙРЕФЛЙ ОБ 20 НЛМ, 5% ТБУФЧПТ ОБФТЙС ГЙФТБФБ, ЖЙЪТБУФЧПТ, ЬФЙМПЧЩК УРЙТФ, ЛУЙМПМ, ЧБФБ, НБТМС.

иПД ТБВПФЩ: дМС ПУЧПЕОЙС НЕФПДЙЛЙ ПРТЕДЕМЕОЙС ПВЭЕЗП ЛПМЙЮЕУФЧБ МЕКЛПГЙФПЧ Ч УЮЕФОПК ЛБНЕТЕ ГЕМЕУППВТБЪОЕЕ РПМШЪПЧБФШУС Ч ДБООПК ТБВПФЕ ЛТПЧША, УФБВЙМЙЪЙТПЧБООПК ГЙФТБФПН ОБФТЙС (ЙМЙ ДТХЗЙН БОФЙЛПБЗХМСОФПН). лТПЧШ ОБВЙТБАФ Ч УНЕУЙФЕМШ ДМС МЕКЛПГЙФПЧ ДП НЕФЛЙ 0,5 Й ТБЪЧПДСФ Ч 20 ТБЪ ЖЙЪТБУФЧПТПН, ОБВЙТБС ЕЗП ДП НЕФЛЙ II.

тБЪВБЧМСАФ ЛТПЧШ ДМС РПДУЮЕФБ МЕКЛПКГЙФПЧ ФБЛЦЕ Ч НБМЕОШЛЙИ ЧЙДБМЕЧУЛЙИ РТПВЙТЛБИ, Ч ЛПФПТЩЕ РПНЕЭБАФ 0,4 НМ ЦЙДЛПУФЙ фАТЛБ, УПУФПСЭЕК ЙЪ 1-2 НМ МЕДСОПК ХЛУХУОПК ЛЙУМПФЩ, 1 НМ 1% ЧПДОПЗП ТБУФЧПТБ ЗЕОГЙБОЧЙПМЕФБ Й 100 НМ ДЙУФЙММЙТПЧБООПК ЧПДЩ. хЛУХУОБС ЛЙУМПФБ Ч ЬФПК ЦЙДЛПУФЙ МЙЪЙТХЕФ ЬТЙФТПГЙФЩ, Б ЗЕОГЙБОЧЙПМЕФ ПЛТБЫЙЧБЕФ СДТБ МЕКЛПГЙФПЧ.

нЙЛТПРЙРЕФЛПК ОБВЙТБАФ 0,02 НМ ЛТПЧЙ, ПУХЫБАФ ЛПОЮЙЛ РЙРЕФЛЙ УБМЖЕФЛПК Й ЧОПУСФ ЛТПЧШ Ч РТПВЙТЛХ У ТБЪВБЧЙФЕМЕН. оЕ ЧЩОЙНБС НЙЛТПРЙРЕФЛЙ ЙЪ РТПВЙТЛЙ, РТПНЩЧБАФ ЕЕ ОЕУЛПМШЛП ТБЪ ЧЕТИОЕК ЮБУФША ТБУФЧПТБ. уПДЕТЦЙНПЕ РТПВЙТЛЙ ИПТПЫП УНЕЫЙЧБАФ Й РПМХЮБАФ ТБЪВБЧМЕОЙЕ ЛТПЧЙ Ч 20 ТБЪ. рТПВЙТЛХ ЪБЛТЩЧБАФ РТПВЛПК Й ПУФБЧМСАФ ОБ 4 НЙО.

рПУМЕ ТБЪВБЧМЕОЙС ЛТПЧЙ ЙЪ РТПВЙТЛЙ У РПНПЭША УФЕЛМСООПК РБМПЮЛЙ ЙМЙ РЙРЕФЛЙ ВЕТХФ 1-2 ЛБРМЙ ЦЙДЛПУФЙ, ЧОПУСФ ЕЕ Ч УЮЕФОХА ЛБНЕТХ зПТСЕЧБ РПД РТЙФЕТФПЕ РПЛТПЧОПЕ УФЕЛМП Й РТЙУФХРБАФ Л РПДУЮЕФХ. чЙЪХБМШОП ЛПОФТПМЙТХАФ, ЮФПВЩ Ч ЛБНЕТЕ РПД УФЕЛМПН ОЕ ВЩМП РХЪЩТШЛПЧ ЧПЪДХИБ.

лБНЕТХ УФБЧСФ ОБ УФПМЙЛ НЙЛТПУЛПРБ Й ЮЕТЕЪ 1-2 НЙОХФЩ, ЛПЗДБ ЛМЕФЛЙ ПУСДХФ Й РТЕЛТБФСФ ДЧЙЦЕОЙЕ, ОБЮЙОБАФ УЮЙФБФШ ЙИ РПД НБМЩН ХЧЕМЙЮЕОЙЕН (И400) РТЙ ХНЕОШЫЕООПН ПФЧЕТУФЙЙ ДЙБЖТБЗНЩ, ПРХЭЕООПН ЛПОДЕОУПТЕ. лМЕФЛЙ УЮЙФБАФ Ч 100 ВПМШЫЙИ (1600 НБМЩИ) ЛЧБДТБФБИ, ТБУРПМПЦЕООЩИ РП ДЙБЗПОБМЙ, Ф.Л. РТЙ ФБЛПН УРПУПВЕ РПДУЮЕФБ ОЙЧЕМЙТХЕФУС ОЕТБЧОПНЕТОПУФШ ТБУРТЕДЕМЕОЙС ЛМЕФПЛ Ч ЛБНЕТЕ.

дМС РПМХЮЕОЙС ВПМЕЕ ФПЮОПЗП ТЕЪХМШФБФБ РТЙОСФП РПДУЮЙФЩЧБФШ ЧУЕ ЛМЕФЛЙ ОЕ ФПМШЛП ЧОХФТЙ НБМПЗП ЛЧБДТБФБ, ОП Й ТБУРПМПЦЕООЩЕ ОБ ЕЗП УФПТПОБИ УМЕЧБ Й УЧЕТИХ, Б ФБЛЦЕ ЛМЕФЛЙ, УПРТЙЛБУБАЭЙЕУС У ЬФЙНЙ УФПТПОБНЙ.

рПУМЕ РПДУЮЕФБ ЛПМЙЮЕУФЧП МЕКЛПГЙФПЧ ПРТЕДЕМСАФ РП ЖПТНХМЕ 3:

љ љљ љ љ љ љљ љ љ (3),

ЗДЕ — и — ЛПМЙЮЕУФЧП МЕКЛПГЙФПЧ Ч 1 НЛМ ЛТПЧЙ;

о — ЛПМЙЮЕУФЧП МЕКЛПГЙФПЧ, РПДУЮЙФБООПЕ Ч 100 ВПМШЫЙИ ЛЧБДТБФБИ;

4000 — ЛПЬЖЖЙГЙЕОФ РЕТЕЧПДБ Л ПВЯЕНХ Ч 1 НЛМ ЛТПЧЙ;

20 — ТБЪЧЕДЕОЙЕ ЛТПЧЙ;

1600 — ЛПМЙЮЕУФЧП НБМЩИ ЛЧБДТБФПЧ.

дМС ХРТПЭЕОЙС ТБУЮЕФБ РТЙ ТБЪЧЕДЕОЙЙ ЛТПЧЙ Ч 20 ТБЪ НПЦОП РПДУЮЙФБООПЕ ЛПМЙЮЕУФЧП МЕКЛПГЙФПЧ Ч 100 ВПМШЫЙИ ЛЧБДТБФБИ ХНОПЦЙФШ ОБ 50.

уТЕДОЕЖЙЪЙПМПЗЙЮЕУЛПЕ ЛПМЙЮЕУФЧП МЕКЛПГЙФПЧ Х ТБЪОЩИ УЕМШУЛПИПЪСКУФЧЕООЩИ ЦЙЧПФОЩИ РПЛБЪБОП Ч РТЙМ. 3.

Источник

Работа 4. Подсчет количества лейкоцитов в камере Горяева

Оборудование: микроскоп, камера Горяева, пипетка, капилляр от гемометра Сали, пробирка с резиновой крышкой.

Реагенты: жидкость Тюрка (100 мл 5%-го р-ра уксусной к-ты и 1 мл 1%-го р-ра генциан фиолетового или метиленового синего), спирт, иммерсионное масло.

Камера Горяева – толстое предметное стекло с четырьмя желобами в средней части, между которыми находятся три узкие площадки, средняя из которых ниже боковых на 0,1 мм и разделена пополам поперечным желобком. По обе стороны от этого желобка расположены сетки, нанесенные на стекло. Сетка Горяева состоит из 225 больших квадратов, из которых 25 расчерчены вертикальными и горизонтальными линиями на 16 малых квадратов. Подсчет лейкоцитов ведут в счетной камере Горяева под малым увеличением микроскопа в 100 неразграфленных больших квадратах. Большой квадрат равен 16 малым, что соответствует 100 х 16 = 1600 малым квадратам. Единицей отсчета является маленький квадрат. Его сторона равна 1/20 мм, площадь 1/20*1/20=1/400 мм 2 . Объем крови, помещающейся над маленьким квадратом, равен 1/400 мм 2 *1/10 мм=1/4000 мм 3 (1/10 мм – высота слоя крови). из 225 больших квадратов

Ход работы. Покровное стекло притереть к камере Горяева до появления радужных колец.

Установить увеличение микроскопа в 280 раз (окуляр на 7, объектив на 40). Поставить камеру на предметный столик микроскопа, найти сетки, рассмотреть.

Пипеткой взять 0,4 мл жидкости Тюрка (5%-ый раствор уксусной кислоты, подкрашенный метиленовым синим) и влить в пробирку.

Набрать кровь в капилляр от гемометра Сали до отметки (0,02 мл); кончик капилляра вытереть ватой; опустить капилляр в пробирку с жидкостью Тюрка; выдуть кровь в пробирку; промыть капилляр, дважды выдувая этот раствор разбавителя. Пробирку закрыть резиновой пробкой, перемешать содержимое. Набрать содержимое пробирки в капилляр. Каплю из капилляра выпустить на среднюю пластинку под притертое покровное стекло к камере Горяева (пузырьки воздуха не должны попасть под покровное стекло). Оставить на 1 мин., чтобы осели клетки крови.

Подсчитать количество лейкоцитов в 100 больших квадратах (или 1600 малых квадратах). Учитывают клетки, находящиеся внутри каждого малого квадрата, на левых и верхних сторонах каждого квадратика. Не считают на нижних и правых сторонах квадрата, т.к. их число учитывается при подсчете лейкоцитов следующего квадрата.

Рассчитать содержание лейкоцитов в 1 м 3 крови. Для этого использовать формулу:

А – количество лейкоцитов в 100 больших квадратах,

4000 – коэффициент для приведения объема к 1 мм 3 (1/4000 мм 3 – объем одного маленького квадрата),

20 – коэффициент разведения крови объемом 0,02 мл,

1600 – количество маленьких квадратов.

Практически для получения действительного содержания лейкоцитов в 1 мкл крови достаточно полученное при подсчете число разделить пополам и приписать 2 нуля (или подсчитанное число клеток крови разделить на 50), ошибка метода составляет ± 7%.

Например, подсчитано 160 лейкоцитов, тогда в абсолютных единицах получаем 8 000 клеток в 1 мкл крови. Для пересчета количества клеток в 1 л (система единиц СИ) необходимо результат умножить на 10 6 , т.е. 8 000*10 6 = 9*10 9 /л.

Оформление работы. Записать или зарисовать последовательность счета клеток в камере Горяева. Подсчитать количество клеток, записать.

Работа 5. Приготовление мазков крови, окрашивание по Романовскому-Гимзе

Оборудование:обезжиренные предметные и шлифовальные стекла, вата, пинцет, пипетка на 10 мл, глазные пипетки, ванночки размером с предметное стекло, карандаш.

Реагенты: кровь рыбы, 70 % этиловый спирт,

В основе методики лежит способность смеси основных (азур II) и кислых красителей (водорастворимый желтый эозин) окрашивать элементы клеток крови в разные цвета и оттенки. Окрашиватся ацидофильные образования в различные оттенки красного цвета, базофильные — в цвета от пурпурного до синего.

Ход работы. Обезжирить предметные стекла

Предметное стекло взять в левую руку между большим и указательным пальцами за короткие грани.

Каплю крови (величиной с зерном пшена) нанести на правый конец стекла (предметным стеклом, углом шлифовального стекла, пипеткой). Капля должна быть такого размера, чтобы конец мазка, приготовленного из нее, не доходил на 1 см до края стекла.

Шлифовальное стекло ставят под углом 45º к основному стеклу у правого края предметного стекла, надвигают на каплю крови так, чтобы у нижнего ребра шлифовального стекла равномерно распределилась капля крови. Распределяют справа налево каплю крови по предметному стеклу равномерно, быстро. Мазок должен быть тонким, ровным, желтоватым, просвечивающимся и отливать должен цветами радуги при просмотре на свет.

А – неравномерный мазок на плохо обезжиренном стекле; Б – короткий мазок; В – длинный и неравномерный мазок; Г – толстый в начале мазок; Д – правильный мазок.

Рисунок 2. Качество приготовленного мазка.

Высушить мазок быстро (под лампой, в термостате, высоко над спиртовкой).

Промаркировать простым карандашом.

Фиксировать в закрытой кювете в этиловом спирте 5 мин., высушить на воздухе.

На дно ч.Петри налить готовую краску Романовского, препарат уложить мазком вниз в краску, закрыть крышкой от ч.Петри (закрытая чашка Петри с увлажнённым фильтром на дне). Мазки окрашивать 20 — 25 минут во влажной камере в термостате при 37 °C.

После окрашивания мазки промыть в проточной воде, сушить на воздухе и исследовать при масляной иммерсии.

Оформление работы. Записать последовательность методики окрашивания.

Источник

Работа 4. Подсчет количества лейкоцитов в камере Горяева

Оборудование: микроскоп, камера Горяева, пипетка, капилляр от гемометра Сали, пробирка с резиновой крышкой.

Реагенты: жидкость Тюрка (100 мл 5%-го р-ра уксусной к-ты и 1 мл 1%-го р-ра генциан фиолетового или метиленового синего), спирт, иммерсионное масло.

Камера Горяева – толстое предметное стекло с четырьмя желобами в средней части, между которыми находятся три узкие площадки, средняя из которых ниже боковых на 0,1 мм и разделена пополам поперечным желобком. По обе стороны от этого желобка расположены сетки, нанесенные на стекло. Сетка Горяева состоит из 225 больших квадратов, из которых 25 расчерчены вертикальными и горизонтальными линиями на 16 малых квадратов. Подсчет лейкоцитов ведут в счетной камере Горяева под малым увеличением микроскопа в 100 неразграфленных больших квадратах. Большой квадрат равен 16 малым, что соответствует 100 х 16 = 1600 малым квадратам. Единицей отсчета является маленький квадрат. Его сторона равна 1/20 мм, площадь 1/20*1/20=1/400 мм 2 . Объем крови, помещающейся над маленьким квадратом, равен 1/400 мм 2 *1/10 мм=1/4000 мм 3 (1/10 мм – высота слоя крови). из 225 больших квадратов

Ход работы. Покровное стекло притереть к камере Горяева до появления радужных колец.

Установить увеличение микроскопа в 280 раз (окуляр на 7, объектив на 40). Поставить камеру на предметный столик микроскопа, найти сетки, рассмотреть.

Пипеткой взять 0,4 мл жидкости Тюрка (5%-ый раствор уксусной кислоты, подкрашенный метиленовым синим) и влить в пробирку.

Набрать кровь в капилляр от гемометра Сали до отметки (0,02 мл); кончик капилляра вытереть ватой; опустить капилляр в пробирку с жидкостью Тюрка; выдуть кровь в пробирку; промыть капилляр, дважды выдувая этот раствор разбавителя. Пробирку закрыть резиновой пробкой, перемешать содержимое. Набрать содержимое пробирки в капилляр. Каплю из капилляра выпустить на среднюю пластинку под притертое покровное стекло к камере Горяева (пузырьки воздуха не должны попасть под покровное стекло). Оставить на 1 мин., чтобы осели клетки крови.

Подсчитать количество лейкоцитов в 100 больших квадратах (или 1600 малых квадратах). Учитывают клетки, находящиеся внутри каждого малого квадрата, на левых и верхних сторонах каждого квадратика. Не считают на нижних и правых сторонах квадрата, т.к. их число учитывается при подсчете лейкоцитов следующего квадрата.

Рассчитать содержание лейкоцитов в 1 м 3 крови. Для этого использовать формулу:

А – количество лейкоцитов в 100 больших квадратах,

4000 – коэффициент для приведения объема к 1 мм 3 (1/4000 мм 3 – объем одного маленького квадрата),

20 – коэффициент разведения крови объемом 0,02 мл,

1600 – количество маленьких квадратов.

Практически для получения действительного содержания лейкоцитов в 1 мкл крови достаточно полученное при подсчете число разделить пополам и приписать 2 нуля (или подсчитанное число клеток крови разделить на 50), ошибка метода составляет ± 7%.

Например, подсчитано 160 лейкоцитов, тогда в абсолютных единицах получаем 8 000 клеток в 1 мкл крови. Для пересчета количества клеток в 1 л (система единиц СИ) необходимо результат умножить на 10 6 , т.е. 8 000*10 6 = 9*10 9 /л.

Оформление работы. Записать или зарисовать последовательность счета клеток в камере Горяева. Подсчитать количество клеток, записать.

Работа 5. Приготовление мазков крови, окрашивание по Романовскому-Гимзе

Оборудование:обезжиренные предметные и шлифовальные стекла, вата, пинцет, пипетка на 10 мл, глазные пипетки, ванночки размером с предметное стекло, карандаш.

Реагенты: кровь рыбы, 70 % этиловый спирт,

В основе методики лежит способность смеси основных (азур II) и кислых красителей (водорастворимый желтый эозин) окрашивать элементы клеток крови в разные цвета и оттенки. Окрашиватся ацидофильные образования в различные оттенки красного цвета, базофильные — в цвета от пурпурного до синего.

Ход работы. Обезжирить предметные стекла

Предметное стекло взять в левую руку между большим и указательным пальцами за короткие грани.

Каплю крови (величиной с зерном пшена) нанести на правый конец стекла (предметным стеклом, углом шлифовального стекла, пипеткой). Капля должна быть такого размера, чтобы конец мазка, приготовленного из нее, не доходил на 1 см до края стекла.

Шлифовальное стекло ставят под углом 45º к основному стеклу у правого края предметного стекла, надвигают на каплю крови так, чтобы у нижнего ребра шлифовального стекла равномерно распределилась капля крови. Распределяют справа налево каплю крови по предметному стеклу равномерно, быстро. Мазок должен быть тонким, ровным, желтоватым, просвечивающимся и отливать должен цветами радуги при просмотре на свет.

А – неравномерный мазок на плохо обезжиренном стекле; Б – короткий мазок; В – длинный и неравномерный мазок; Г – толстый в начале мазок; Д – правильный мазок.

Рисунок 2. Качество приготовленного мазка.

Высушить мазок быстро (под лампой, в термостате, высоко над спиртовкой).

Промаркировать простым карандашом.

Фиксировать в закрытой кювете в этиловом спирте 5 мин., высушить на воздухе.

На дно ч.Петри налить готовую краску Романовского, препарат уложить мазком вниз в краску, закрыть крышкой от ч.Петри (закрытая чашка Петри с увлажнённым фильтром на дне). Мазки окрашивать 20 — 25 минут во влажной камере в термостате при 37 °C.

После окрашивания мазки промыть в проточной воде, сушить на воздухе и исследовать при масляной иммерсии.

Оформление работы. Записать последовательность методики окрашивания.

Дата добавления: 2014-12-12 | Просмотры: 4097 | Нарушение авторских прав

Источник

Работа 1. Подсчёт количества лейкоцитов

Для подсчета количества лейкоцитов кровь следует развести жидкостью, ко­торая устранила бы эритроциты. Разбавляющими жидкостями для под­счета являются гипотонические растворы, гемолизирующие эритроциты. Дистиллированная вода гемолизирует эритроциты. Добавляемая уксус­ная кислота просветляет протоплазму лейкоцитов, вследствие чего ядра хорошо видны. Добавление краски (генцианвиолета), окрашивающей ядра способствуют различию их формы.

Состав жидкости Тюрка для разбавления:

Ледяная уксусная кислота — 3см 3 , 1% водный раствор генцианвиолета — 3 см 3 , дистиллированная вода — 300см 3 .

Разбавление крови с помощью смесителя.

Для разбавления лейкоцитов применяется смеситель, разбавляю­щий не в 200 раз, а только в 20, поэтому в смесителях для лейкоци­тов имеются метки: на капилляре цифры 0.5 и 1, выше расширения цифра 11 (рис. 59).

. Набрать в смеситель кровь до метки 0.5 и жид­кость Тюрка до метки 11. Перевести смеситель в горизонтальное по­ложение, снять резиновую трубочку, задать оба конца пальцами и встряхивать 1.5 минуты.

Разбавление крови пробирочным методом.

Разводят исследуемую кровь в 20 раз, для этого в сухую пробирку наливают 0.4 мл уксусной кислоты. Набирают 0.02 мл кро­ви. Кончик пипетки вытирают фильтровальной бумагой или марлей, сле­дя за тем, чтобы из пипетки кровь не вылилась.

В — смеси­тель для эритроцитов, Г — сме­ситель для лейкоцитов.

Выдувают кровь из пипетки на дно пробирки, тщательно перемешивают (повторно набирая и выдувая смесь крови с уксусной кислотой). Маркируют пробирку и оставляют до мо­мента счета (допускается счет лейкоцитов не более чем через 2…4 ч после взя­тия крови).

Заправить счетную камеру разбавленной жидкостью, как в предыдущем случае, при подсчете эритроцитов. Сосчитать лейкоциты на площади 100 больших квадратов, сумму умножить на 50, что будет соответствовать количеству лейкоцитов в 1 мм 3 крови.

По международной системе измерения общую сумму лейкоцитов умножить на 10 6 , что будет соответствовать количеству лейкоцитов в одном литре крови. Пример: в 100 больших квадратах подсчитали 140 лейкоцитов, в 1 мм 3 крови их будет 7000 (140 * 50), а в одном литре крови 7 * 10 9 (СИ).

У здоровых лошадей, крупного и мелкого рогатого скота в крови содержится 6…10 Г/л лейкоцитов (Г = 10 9 ; читают: гига на литр); у свиней лейкоцитов больше – 8…16, а у птиц – 20…40 Г/л.

Работа 2. Определение групп крови.

Эритроциты крови одного животного могут склеиваться сывороткой другого. Происходит это при наличии в эритроцитах веществ которые склеиваются (агглютиногенов) и склеивающих веществ сыворотки (агглютининов).

РЕАКЦИЯ АГГЛЮТИНАЦИИ — склеивания сывороткой крови одного индивидуума эритроцитов другого, наступает при смешивании одноименных агглютининов и агглютиногенов, что может возникнуть при переливании несовместимой крови. Различают два вида агглютиногенов – А и В, и два вида агглютининов — ,.

Взять чистое предметное отекло, поместить его на белую бумагу. Во избежание ошибки сделать на стекле пометки для сывороток группы I(O), II(А), III(В) и IV (АВ), а затем ниже подписи нанести разными пипетками по 1…2 капли сыворотки всех трех групп.

Для прокалывания пальца человека используют скарификатор. Затем перенести кровь отдель­ными чистыми палочками в каждую каплю стандартной сыворотки. Можно переносить кровь углом чистого предметного стекла, причем каждой кап­ли сыворотки можно касаться только одним углом. Количество исследуе­мой крови должно быть значительно меньше количества сыворотки.

Каждую каплю крови тщательно размешать с сывороткой, пока смесь не будет иметь равномерную розовую окраску. За реакцией агглютинации наблюда­ют в течение 5 минут, периодически покачивая предметное стекло.

Если капля смеси остается гомогенной, равномерно окрашенной, то значит, что агглютинации нет. При агглютинации капля состоит из комочков красного цвета, разделенных прозрачной смесью плазмы и стандартной сыворотки. Для исключения «холодовой агглютинации» к капле сыворотки с кровью приливают каплю физиологического раствора комнатной температуры.

Для определения групп крови отметить, в каких каплях стандартной сыворотки произошла или нет агглютинация. Сыворотки группы I(O) и IV(АВ) являются контролем.

Если агглютинация не произошла в сыворотках ни одной из групп, то исследуемая кровь будет I группы.

Если агглютинация произошла в сыворотках I() иIII() групп, то исследуемая кровь —II группы.

Если агглютинация произошла в сыворотках I() иII() групп, то исследуемая кровь –III группы.

Если агглютинация произошла в сыворотках I(),II() иIII() групп, то исследуемая кровь —IV группы. В сыворотке IV (0), группы агглютинации не происходит, так как там не содержатся агглютинины.

Около 45 % населения имеют 1 группу, 35 % — 2 группу, 15 % — 3 группу, 6 % — 4 группу. В эритроцитах 85 % людей содержится антиген – резус – фактор. Занесите таблицу (табл. 16.) в тетрадь.

Таблица 16 Схема определения групп крови.

Агглютиногены в эритроцитах групп крови

Агглютинины в плазме (сыворотке)

I()

II()

III()

Источник